Top.Mail.Ru
Главная - Об институте - Структура - Кафедры - Кафедра общей и медицинской генетики - Изучение влияния генетических факторов на женское бесплодие

Изучение влияния генетических факторов на женское бесплодие

Исследование выполняется на базе:

Институт биологии и биомедицины ННГУ им. Н.И. Лобачевского Кафедра общей и медицинской генетики

Руководитель исследования: Ведунова Мария Валерьевна – д.б.н., профессор, директор ИББМ

Состав исследовательской группы:

  1. Ведунова Мария Валерьевна – д.б.н., профессор каф. общей и медицинской генетики, директор ИББМ
  2. Давыдова Екатерина Александровна – ассистент каф. общей и медицинской генетики ИББМ
  3. Джорджевич Надя – студент специалитета каф. общей и медицинской генетики ИББМ (направление медицинская кибернетика)
  4. Короткова Ксения Андреевна – студент каф. общей и медицинской генетики ИББМ
  5. Бекренева Вероника Андреевна – студент каф. общей и медицинской генетики ИББМ

Цель исследования: изучить молекулярно-генетические механизмы, лежащие в основе нарушений репродуктивной функции у женщин, а также выявить генетические маркеры, ассоциированные с различными формами бесплодия

Описание исследования

Бесплодие представляет собой многофакторное патологическое состояние репродуктивной системы, характеризующееся разнообразными нарушениями, которые значительно влияют на фертильность. Данное заболевание охватывает широкий спектр клинических проявлений, варьирующих от транзиторных функциональных дисбалансов до глубинных и хронических патологических изменений. Согласно последним статистическим данным, примерно 10% женщин репродуктивного возраста сталкиваются с невозможностью зачатия или вынашивания беременности до срока гестации. Диагноз женского бесплодия устанавливается при отсутствии клинической беременности в течение двенадцати месяцев регулярных незащищенных половых контактов с партнером, обладающим фертильной способностью.

В рамках данного исследования объектом изучения послужила кровь женщин, у которых были диагностированы различные патологии репродуктивной функции, включая нарушения зачатия и/или вынашивания беременности. В качестве выборки были привлечены пациентки, обратившиеся за медицинской помощью в Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Нижегородской области «Нижегородский областной центр охраны здоровья семьи и репродукции». Методологический подход исследования включал проведение комплексного анализа биоматериала, в котором приняли участие женщины, добровольно согласившиеся на участие в медицинских процедурах. Все участницы прошли стандартизированное анкетирование, направленное на сбор демографических данных и информации о состоянии их репродуктивного здоровья. Медицинские манипуляции осуществлялись под строгим контролем квалифицированных специалистов, что позволило минимизировать потенциальные риски и обеспечить максимальный комфорт для участниц. Все данные, полученные в ходе исследования, обрабатывались с соблюдением принципов конфиденциальности и соответствовали установленным этическим нормам и нормативным требованиям. Это обеспечило соответствие исследования международным стандартам биомедицинских исследований и позволило получить достоверные результаты.

Используемые методы:

  1. Кариотипирование

    Метод представляет собой цитогенетическое исследование, направленное на выявление отклонений в структуре и количестве хромосом. Позволяет идентифицировать как хромосомные аномалии, которые могут оказывать существенное влияние на здоровье индивида, так и вариации, предположительно не имеющие клинического значения. Тем не менее, обнаружение таких вариаций имеет критическую значимость для преконцепционного консультирования и планирования беременности, а также для оценки рисков развития патологий плода и аномалий развития у будущего ребенка.

    Стандартное кариотипирование, несмотря на свою значимость в диагностике хромосомных аномалий, не всегда способно выявить мозаицизм на ранних стадиях из-за ограниченной чувствительности метода к незначительным изменениям в хромосомном наборе. Мозаицизм – гетерогенное состояние, характеризующееся наличием двух или более клеточных линий с различными кариотипами в одном организме. Это состояние может иметь серьёзные последствия для репродуктивного здоровья женщин, включая бесплодие, повышенный риск рождения ребёнка с хромосомными аномалиями, а также риск спонтанных абортов и преждевременных родов. Для выявления мозаицизма рекомендуется применение флуоресцентной гибридизации in situ (FISH), которая обладает высокой разрешающей способностью и позволяет детектировать даже минимальные хромосомные аберрации. А при подтверждении мозаицизма необходимо незамедлительно обратиться к врачу-генетику для разработки индивидуального плана медицинского наблюдения и, при необходимости, лечения, учитывая все потенциальные риски и особенности конкретного клинического случая.)

    Метафазная пластинка обследуемой женщины с обозначенным хромосомам по группам согласно Парижской классификации хромосом Кариотип 47, ХХХ. Х-хромосомы обозначены красными кружками.  
  2. Метод флуоресцентной гибридизации in situ (FISH)

    Метод представляет собой передовой цитогенетический инструмент, широко применяемый в области цитогенетики и молекулярной биологии для детального анализа хромосомных структур и их компонентов. Этот высокоспецифичный метод позволяет проводить молекулярно-цитогенетический анализ с высокой степенью разрешения, что делает его незаменимым в диагностике хромосомных аномалий и в исследованиях, направленных на изучение генетического разнообразия. FISH-технология базируется на использовании флуоресцентно меченных ДНК-зондов, которые комплементарно связываются с целевыми последовательностями на хромосомах. Визуализация результатов осуществляется с помощью специализированных микроскопов, оснащенных фильтрами, которые позволяют избирательно детектировать флуоресцентные сигналы. Благодаря этому, метод обеспечивает высокую чувствительность и специфичность в выявлении хромосомных перестроек, анеуплоидий, делеций, дупликаций и других генетических аномалий. Применение FISH позволяет проводить комплексный анализ кариотипа, выявлять скрытые хромосомные изменения, которые не обнаруживаются при традиционных цитогенетических методах, и проводить молекулярную диагностику на уровне отдельных хромосом или их сегментов. Это делает FISH-анализ важным инструментом в клинической генетике, онкологии, репродуктивной медицине и исследованиях генетической предрасположенности к заболеваниям.)

    Результаты флюоресцентной гибридизации in situ (FISH). На рисунке представлены ядра трех типов клеток: а – 46,XX; б – 47,ХХХ; в – 45,ХО; г – 46,XX   
  3. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)

    ПЦР в реальном времени представляет собой высокоточный метод молекулярной биологии, предназначенный для детектирования и количественного анализа однонуклеотидных полиморфизмов (ОНП). Этот метод позволяет осуществлять мониторинг генетических вариаций с высокой степенью чувствительности и специфичности, что делает его незаменимым инструментом в различных областях биомедицины и генетики. ПЦР в реальном времени, также известная как количественная ПЦР (кПЦР), основана на принципе амплификации ДНК с использованием специфичных праймеров и термостабильной ДНК-полимеразы. В процессе реакции происходит экспоненциальное увеличение количества амплифицируемой последовательности, что позволяет детектировать даже минимальные количества целевой ДНК. Введение флуоресцентных красителей в реакционную смесь позволяет визуализировать накопление продукта амплификации в режиме реального времени, что обеспечивает высокую точность и воспроизводимость результатов.


Это интересно!

Ген KITLG (rs10506957), находящийся на длинном плече 12 хромосомы, кодирует лиганд рецептора тирозинкиназы, кодируемого локусом KIT. Этот лиганд является плейотропным фактором, действующим внутриутробно при развитии половых и нервных клеток. Сигнальная система KL/c-kit, вероятно, контролирует выживаемость фолликулов яичников человека на ранних стадиях развития самого фолликула (Carlsson et al., 2006). Полиморфизм гена KITLG (rs10506957) участвует в регуляции апоптоза. Нарушение данного процесса может являться одним из механизмов снижения овариального резерва при глубоком инфильтративном эндометриозе, что может послужить возникновению бесплодия (Мелкозерова и др., 2021).

 

Ген GNRHR (rs104893837 и rs28933074), находится на длинном плече 4 хромосомы,кодирует рецептор гонадотропин-рилизинг-гормона 1-го типа. Данный рецептор – член семейства семитрансмембранных рецепторов, которые сопряжены с G-белком. Экспрессируется на поверхности гонадотропных клеток гипофиза, лимфоцитов, молочной железы и яичников. Стимулирует секрецию гонадотропных гормонов – фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) и лютеинизирующего гормона (ЛГ). Дефекты, а именно миссенс-мутации в данном гене являются одной из главных причин в  возникновении гипогонадотропного гипогонадизма, данное заболевание проявляется задержкой в половом развитии, следовательно может привести к развитию бесплодия (Кокорева и др., 2021). Полиморфизм GNRHR262 (rs104893837) нарушает передачу сигнала, а полиморфизм GNRHR284 (rs28933074) влияет на связывание с лигандом при аутосомно-рецессивном ИГГ у пациентов с неполным дефицитом гонадотропин-рилизинг гормона (Roux et al., 1997). Основная роль GNRHR заключается в регуляции нормального менструального цикла при стимуляции секреции лютеинизирующего гормона и фолликулостимулирующего гормона, а также принимает участие в формировании желтого тела. Одним из основных патофизиологических механизмов, лежащих в развитии СПКЯ, является увеличение частоты секреции гонадотропин-релизинг-гормона (Coutinho et al., 2019).

 

Ген FSHB (rs10835638), находится на коротком плече 11 хромосомы, кодирует специфичную бета-субъединицу фолликулостимулирующего гормона. В сочетании с лютеинизирующим гормоном стимулирует выработку яйцеклеток (Северин, 2003). Полиморфизм гена FSHB -211 G> T (rs10835638) оказывает влияние на уровни сывороточного гонадотропина у женщин с аменореей, у женщин с бесплодием, а статус носительства аллеля Т повышен среди случаев идиопатического бесплодия (Rull et al., 2018). Было доказано, что полиморфизмы данного гена влияют на развитие Синдрома поликистозных яичников (Hong et al., 2020). Дефицит фолликулостимулирующего гормона влияет на развитие аменореи у женщин (Matthews et al., 1993). Снижение уровня ФСГ наблюдается у женщин с генотипами GT и ТТ (La Marca et al., 2013). Аллель Т связан с развитием умеренного эндометриоза (Bianco et al., 2023), а также приводит к удлинению менструального цикла, замедляет наступление менопаузы и негативно влияет на фертильность у женщин. Полиморфизм rs10835638 влияет на созревание фолликулов яичников у здоровых девочек в пубертатный период (Busch et al., 2016). Генотип ТТ связан со снижением уровня прогестерона – гормона, который обеспечивает возможность зачатия, его пониженное содержание может привести к бесплодию (Shuring et al., 2012).

 

Ген LHB (rs5030774), расположен на длинном плече 19 хромосомы, относится к семейству бета-цепей гликопротеиновых гормонов и кодирует бета-субъединицу лютеинизирующего гормона (ЛГ). Лютеинизирующий гормон вырабатывается в гипофизе и обеспечивает такие процессы, как сперматогенез у мужчин, овуляцию у женщин, стимулируя синтез стероидов в яичках и яичниках. Полиморфизм rs5030774 (Gly102Ser) ассоциирован с бесплодием и нарушением менструального цикла (Haller et al., 2008). Лютеинизирующий гормон особенно важен для развития и роста фолликулов, а также способствует созреванию яйцеклеток, но аномальная секреция ЛГ вызывает ановуляцию, лютеиновую недостаточность, преждевременное созреванием яйцеклеток (нарушение менструального цикла, СПКЯ), бесплодию (Simoni et al., 1997). Гомозиготная мутация 5’-сайта сплайсинга в данном гене характеризуется вторичной аменореей и бесплодием (Lofrano-Porto et al., 2007). Также данный полиморфизм участвует в развитии эндометриоза и в конечном счете развитии бесплодия (Liao et al., 1998). Данный вариант SNP также играет роль в развитии СПКЯ (Kim et al., 2001).

 

Ген MMP2 (rs243865), расположен на длинном плече 16 хромосомы, относится к семейству генов матриксных металлопротеиназ (MMP). Данные ферменты представляют собой цинк-зависимые ферменты, которые способны расщеплять компоненты внеклеточного матрикса и молекулы, участвующие в передачи сигнала. Белок, который кодирует данный ген, состоит из желатиназы А, коллагеназы IV типа, она в свою очередь содержит три повтора фибронектина II типа в каталитическом центре. Белок участвует в работе нервной системы, отторжении эндометрия. Матриксные металлопротеиназы играют важную роль во время менструации, а именно в разрушении и деградации ткани эндометрия. После менструации необходимо контролировать активность данных ферментов, поскольку эндометрий дифференцируется и восстанавливается. Это позволяет избежать аномального разрушение тканей (Selvais et al., 2011). Исследователи провели оценку ассоциации полиморфизма гена MMP2 (rs243865) с возникновением бесплодия. Выяснилось, что у женщин с аллелем Т имелся повышенный риск бесплодия (Филипенкова и др., 2020). Также аллель Т данного гена статистически значимо чаще выявлялись проблемы с нарушением кровообращения в мелких сосудах эндометрия. Это может препятствовать наступлению беременности (Щербакова и др., 2021).

 

Ген MMP12 (rs652438), находится на длинном плече 11 хромосомы, кодирует представителя семейства матриксных металлопротеиназ (ММР) пептидазы М10. Белки данного семейства участвуют в разрушении внеклеточного матрикса в ходе нормальных физиологических процессах: эмбриональное развитие, ремоделирование тканей, размножение. Данные показывают, что полиморфизм rs652438 гена MMP12 играет роль в развитии поверхностного эндометриоза (Borghese et al., 2008).

Все новости